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兔可溶性核因子κB受体活化因子配基酶联免疫分析试剂盒使用说明

时间:2017-03-22      阅读:295

本试剂盒仅供研究使用。

检测范围:                                                          96T

2pg/ml-85pg/ml

 

使用目的:

本试剂盒用于测定兔血清、血浆及相关液体样本中可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)含量。

实验原理

本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本兔可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)水平。用纯化的兔可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL),再与HRP标记的可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过*洗涤后底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成zui终的黄色。颜色的深浅和样品中的可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中兔可溶性核因子κB受体活化因子配基(sRANKL)浓度。

试剂盒组成

1

30倍浓缩洗涤液

20ml×1瓶

7

终止液

6ml×1瓶

2

酶标试剂

6ml×1瓶

8

标准品(160pg/ml)

0.5ml×1瓶

3

标包被

12孔×8条

9

标准品稀释液

1.5ml×1瓶

4

样品稀释液

6ml×1瓶

10

说明书

1份

5

显色剂A液

6ml×1瓶

11

封板膜

2张  

6

显色剂B液

6ml×1/瓶

12

密封袋

1个

标本要求 

1.标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融

2.不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。

操作步骤

  • 标准品的稀释:本试剂盒提供原倍标准品一支,用户可按照下列图表在小试管中进行稀释。

80pg/ml

5号标准品

150μl的原倍标准品加入150μl标准品稀释液

40pg/ml

4号标准品

150μl的5号标准品加入150μl标准品稀释液

20pg/ml

3号标准品

150μl的4号标准品加入150μl标准品稀释液

10pg/ml

2号标准品

150μl的3号标准品加入150μl标准品稀释液

5pg/ml

1号标准品

150μl的2号标准品加入150μl标准品稀释液

 

 

  • 加样:分别设空白孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)、标准孔、待测样品孔。在酶标包被板上标准品准确加样50μl,待测样品孔中先加样品稀释液40μl,然后再加待测样品10μl(样品zui终稀释度为5倍)。加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀
  • 温育:用封板膜封板后置37℃温育30分钟。   
  • 配液:将30倍浓缩洗涤液用蒸馏水30倍稀释后备用
  • 洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30秒后弃去,如此重复5次,拍干。
  • 加酶:每孔加入酶标试剂50μl,空白孔除外
  • 温育:操作同3。
  • 洗涤:操作同5。
  • 显色:每孔先加入显色剂A50μl,再加入显色剂B50μl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色10分钟.
  • 终止:每孔加终止液50μl,终止反应(此时蓝色立转黄色)
  • 测定:以空白空调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值) 测定应在加终止液后15分钟以内进行。
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