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                                          real-time PCR实验检测

Real-Time PCR 技术，又称实时定量荧光PCR，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程，zui后通过标准曲线对未知模板进行总量分析或通过Ct值对模板进行相对定量。

服务说明

荧光定量PCR实验步骤

1、总RNA抽提（枪头和离心管均经过湿热灭菌，无RNA酶）

1）取匀浆器，加入1ml的Trizol Reagent，置冰上预冷。

2）取100mg组织，加入到匀浆器中。

3）充分研磨直至无可见组织块。

4）13000g离心10min取上清。

5）加入250 μl，颠倒离心管15s，充分混匀，静置3min。

6）4℃下13000g离心8min。

7）将上清转移到一新的离心管中，加入0.8倍体积的异丙醇，颠倒混匀。

8）-20℃放置15min。

9）4℃下13000g离心10min，管底的白色沉淀即为RNA。

10）吸除液体，加入75%乙醇1.5ml洗涤沉淀。

11）4℃下13000g离心5min。

12）将液体吸除干净，将离心管置于超净台上吹3min。

13）加入20μl无RNA酶的水溶解RNA。

14）55℃孵育5min。

2、反转录（枪头和PCR均经过湿热灭菌，无RNA酶）

1）取一PCR管，加入含2μg RNA的溶液。

2）加入1μl oligo(dT)15。

3）用无核糖核酸酶的去离子水补足至12μl。

4）于PCR仪上70℃保温5min，迅速置冰上冷却。

5）依次加入4μl  5×buffer，2μl  10mM dNTPs，1μl RNA inhibitor和1μl 反转录酶，用枪抽吸混匀。

6）于PCR仪上42℃保温60min，结束后80℃保温5min灭活反转录酶。

3、定量PCR

1）取0.2ml PCR管，配制如下反应体系，每个反转录产物配制3管。

2× qPCR Mix  12.5μl

7.5μM基因引物 2.0μl

反转录产物  2.5μl

ddH2O   8.0μl

2）取0.2ml PCR管，配制如下反应体系，每个反转录产物配制3管。

2×qPCR Mix  12.5μl

7.5μM内参引物 2.0μl

反转录产物  2.5μl

ddH2O   8.0μl

3）PCR扩增

预变性    95℃，10min

循环（40次）      95℃，15s→60℃，60s

溶解曲线   75℃→95℃，每20s升温1℃

4、结果处理

ΔΔCT法：

A=CT(目的基因，待测样本)- CT(内标基因，待测样本)

B=CT(目的基因，对照样本)- CT(内标基因，对照样本)

K=A-B

表达倍数=2-K

real-time PCR实验检测

注意事项

1、长度：15—30bp。 

2、G十c含量：应在40%一60%之间。

3、碱基分布的随机性

4、引物自身：不要含有自身互补序列，否则会形成发夹样二级结构。

5、引物之间：两个引物之间不应有多于4个的互补或同源碱基，不然会形成引物二聚体，尤应避免3’端的互补重叠。

6、上下游引物的互补性：一个引物的3‘末端序列不允许结合到另一个引物的任何位点上。

7、3’末端：如果可能的话，每个引物的3‘末端碱基应为G或C。

8、设计RT-PCR的引物时，上下游引物要跨内含子，以消除基因组DNA的干扰。

9、引物设计好后再NCBI上进行序列比对，检查是否可能有错配产物扩增。

10、引物设计要注意种属。