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过氧化物测试盒(DIOX-250)

时间:2016-11-19      阅读:286

产品说明

过氧化物(如过氧化氢H2O2)是在氧化应激条件下形成的一种重要的活性氧。过氧化物含量高可能与衰老、哮喘、糖尿病、动脉浆样硬化、白内障、关节炎和神经组织退化等疾病有关。

 

在科研和药物研发中,方便、直接、自动化的过氧化物含量检测手段是zui为理想的。本公司研制的过氧化物检测试剂盒可直接用于生物样品的检测,免除了预处理过程。检测原理是利用试剂中的Fe2+ 被样品中的过氧化物氧化为Fe3+,并能与二甲酚橙反应生成紫色复合物的特性,在波长540-610nm(585nm)下检测,其颜色深浅程度与样品中过氧化物的含量成正比。通过配方的改良,充分减小了未处理的样品中其它杂质的干扰。

 

产品特点

敏、准确:检测范围在0.4 – 100 μM (14 – 3400 ng/mL)

 

简单、高通量:整个测试过程只需加入一种工作试剂并反应30分钟。利用96孔板高通量检测,每天可以测试上千份样本。

 

适用范围

1. 检测生物样品(如,血清、血浆、尿液、细胞溶液和培养液)中过氧化物含量。

 

2.适用于药理学研究,检测药物对过氧化物代谢的影响。

 

试剂盒规格(96孔板供250份测试)

   试剂A:1 mL              试剂B50 mL  

   标准品:1 mL 3% 双氧水(H2O2) 

 

储藏条件:在室温下运输, 4°C下保存。

 

注意事项:本产品仅供研究用。使用过程中应严格遵循实验安全措施。

 

96孔板检测步骤

样本处理:一些化学成分会干扰检测,在样本准备时要避免接触。这类物质包括:抗坏血酸、乙二胺四乙酸、肝磷脂、二甲基亚砜(>0.02%)(>0.6%),SDS(>0.12%),氨基丁三醇(>8mM)和乙醇(>0.4%)

 

新鲜的样品可以马上用于检测,或在-20°C下存,不要反复冻融。如果样品出现颗粒,应离心后取上清进行检测。

 

试剂准备:检测前所有试剂须放置至室温每孔需工作试剂100 μL,按试剂A试剂B = 1:100的比例配制足量工作试剂。

 

1. 标准品:标准品在检测前现配。在1.5mL 的离心管中混合10 μL 3%的双氧水和990μL 的水。再取混合的溶液5μL 与1465μL水混合。zui终的双氧水的浓度为30 μM(标注“预混合液”),按下表比例将其稀释

 

2. 将稀释后的标准品和样品各取40 μL,放入透明平底96孔板不同孔中。将200 μL工作试剂加入所有标准品孔和样品孔中。

 

3. 室温下反应30分钟,在585nm(波长范围540-610nm)处读取吸光度。注:若极少数情况下加入试剂后产生沉淀,可将反应液

 

 

编号

预混合液+水

体积(μL)

双氧水(μM)

1

100μL+0μL

100

30

2

80μL+20μL

100

24

3

60μL +40μL

100

18

4

40μL+60μL

100

12

5

30μL+70μL

100

  9

6

20μL+80μL

100

  6

7

10μL+90μL

100

  3

8

0μL+100μL

100

  0

 

 

转入1.5毫升的离心管,14,000rpm离心2分钟,再小心移取200 mL上清液至一干净孔,读OD值,乘以1.2校正体积因素。

 

浓度计算

用标准品OD值减去空白对照(, 8号)OD值,以此值对双氧水浓度作图(见标准曲线)

 

样品:用样品(OD值)减去空白对照(OD值),以此OD值对照标准曲线,得出样品过氧化物的浓度。

 

单位换算: 1 μM 双氧水相当于34 ng/mL 或 34 ppb

 

实验必需品(未提供)

吸液用仪器及附件,96孔板和微孔板分析仪。

 

96孔板测试标准曲线

 

论文发表

[1]. Chi Li Yu et al (2008). A novel caffeine dehydrogenase in pseudomonas sp. strain CBB1 oxidizes caffeine to trimethyluric acid. J. Bacteriol. 190(2):772–776.

 

[2]. Deshmane, S.L. et al (2009). Activation of the oxidative stress pathway by HIV-1 Vpr leads to induction of hypoxia-inducible factor 1alpha expression. J Biol Chem. 284(17):11364-11373.

 

[3]. Giao, N.N. et al (2007). Water deficit induced pollen sSterility associated with a programmed cell death and oxidative stress in rice anthers. Proceedings the 2nd International Rice for the Future pp202-209.

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