线粒体复合体Ⅴ试剂盒说明书
时间:2017-09-22 阅读:258
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258次线粒体复合体Ⅴ试剂盒说明书 分光光度法 25 管/12 样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
线粒体复合体Ⅴ又称F1F0-ATP合酶,广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中,
由F1和F0两个亚单位组成。该酶利用呼吸链产生的质子电化学梯度催化ATP合成,也可逆过
程水解ATP。此外,复合体Ⅴ还存在于叶绿体、异养菌和光合细菌中。复合体Ⅴ是线粒体氧
化磷酸化和叶绿体光合磷酸化合成ATP的关键酶。
线粒体复合体Ⅴ试剂盒说明书 测定原理
复合体Ⅴ水解ATP产生 ADP和 Pi,通过测定 Pi增加速率来测定复合体Ⅴ活性。
需自备的仪器和用品
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸
馏水。
试剂的组成和配制
试剂一:25mL×1瓶,-20℃保存;
试剂二:25mL×1瓶,-20℃保存;
试剂三:1 mL×1瓶,-20℃保存;
试剂四:粉剂×1 支,-20℃保存;临用前每支加入 1.3mL蒸馏水,充分溶解备用,用不完的
试剂仍-20℃保存;
试剂五:6mL×1 瓶,4℃保存;
试剂六:粉剂×1 瓶,4℃保存;临用前加入 3mL蒸馏水,充分混匀;溶解后4℃保存一周;
试剂七:粉剂×1 瓶, 4℃保存;临用前加入 10mL蒸馏水,充分混匀;溶解后4℃保存一周;
试剂八:粉剂×1 瓶, 4℃保存;临用前加入 10mL蒸馏水,充分混匀;溶解后4℃保存一周;
试剂九:液体10mL×1 瓶,室温保存。
线粒体复合体Ⅴ试剂盒说明书 定磷试剂的配制:按 H2O: 试剂七:试剂八:试剂九=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷试剂应
为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染(请根据需要,用多少配多少) 。
注意:配试剂用新的烧杯、玻棒和玻璃移液器,或者一次性塑料器皿,以避免磷污染。
样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
① 准确称取 0.1g组织或收集 500万细菌或细胞,加入 1mL试剂一和 10uL 试剂三,用冰
浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆 600g,4℃离心5min。
③ 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅴ(此步可选
做) 。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体,加入 800uL试剂二和 8uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,
功率 20%或200W,超声 3s,间隔 10秒,重复 30 次),用于复合体Ⅴ酶活性测定。
测定步骤
1、酶促反应
试剂名称(μL) 对照管 测定管
试剂四 25 25
试剂五 100 100
样本 125
混匀, 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)准确水浴 30min
试剂六 50 50
样本 125
混匀,4000g,25℃离心10min,取上清液
2、定磷
上清液 170 170
定磷试剂 830 830
混匀,室温静置 10min左右,在 660nm处读取 A测定管和 A对照管,计算 ΔA=A测定管-A
对照管。
复合体Ⅴ活性计算
标准条件下测定的回归方程为 y = 1.274x + 0.004;x为标准品浓度(mmol/L),y为 A值。
1、组织中复合体Ⅴ活性的计算:
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg组织蛋白每分钟产生1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。
复合体Ⅴ活性(nmol/min/mg prot)=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V反总×106
]÷(V样×Cpr) ÷T
=62.8× (ΔA-0.004) ÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每 g组织每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。
复合体Ⅴ活性(nmol/min /g 鲜重) =[(ΔA-0.004) ÷1.274×V反总×106
]÷(W× V样÷V样总) ÷T
=50.7× (ΔA-0.004) ÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。
复合体Ⅴ活性(nmol/min /104
cell)=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反总×106
]÷(500×V 样÷V 样总)
÷T=0.101× (ΔA-0.004)
V反总:反应体系总体积,3×10-4
L; V样:加入样本体积,0.125 mL;V样总:加入提取
液体积,0.808 mL;T:反应时间,30 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,
g;500:细胞或细菌总数,500万。