随着科学技术的发展和生活水平的不断提高对生物医药产品的质量要求也越来越高，所以对制备工艺中所涉及到的各种原材料的质量标准要求也越来越高，特别是对用于细胞培养基中的主要天然成份――牛血清的质量要求也不断提高。牛血清包括胎牛血清、新生牛血清和成牛血清。（一）、WHO公布的《用动物细胞体外培养生产生物制品规程》中的要求：

1. 牛血清必须来自有文件证明无牛海绵状脑病的牛群或国家。并应具备适当的监测系统。

2.有些国家还要求牛血清来自未用过反刍动物蛋白饲料的牛群。

3.证明所用牛血清中不含对所生产疫苗病毒的抑制物。

4.血清要通过滤膜过滤除菌，保证无菌。

5.无细菌、霉菌、支原体和病毒的污染，有些国家要求无细菌噬菌体污染。

6.对细胞有良好的支持繁殖作用。

（二）、我国在对牛血清的质量2000年版《中国生物制品主要原辅料质控标准》中提出比较严格的标准要求。包括蛋白质含量，细菌、真菌、支原体、牛病毒、大肠杆菌噬菌体、细菌内毒素，支持细胞增殖检查。

（三）、美国对牛血清的质量要求：Gibco 和Sigma二家主要的美国牛血清供应商的牛血清都已进入到我国市场，他们对其质量标准要求都极为严格，从血清来源到产品质量都有明确规定。

1） 血清来源：可从世界各国收集胎牛血清，但是必须符合他的质量标准和美国*进口要求。地方当局还不清楚本地是否有牛海绵状病毒流行的血清不收集，有说明血清质量的证明资料：包括收集过程的全部资料、检验结果和交付情况。

2）血清的收集：胎牛血清是心脏穿刺取血，新生牛（10～14天）和小牛（10个月内）血清静脉取血。血清采集条件必须符合工业生产的标准：低温下采集、一次分离、分离后立即混合冻存。符合要求的血清56℃水浴30分钟灭活。

3）血清的制备：

a. 超低IgG胎牛血清：通过亲和层析工艺去除胎牛血清中的γ球蛋白，使FBS γ球蛋白含量减到zui低，一般IgG≤5ug/ml，生物学活性不变。

b. 血清透析：用12000～14000分子量的透析膜在0.15M NaCl中透析直到使葡萄糖含量＜0.5mg/ml（用葡萄糖氧化酶／过氧化酶方法测定）。

c. γ－射线照射：已经证明γ－射线照射可以有效灭活血清中可能污染的病毒、支原体。照射剂量为30～45KG。而且这个剂量的γ－射线照射不会改变血清的理化性质和对细胞培养的影响。

4）除菌过滤:经过上述处理的粗制血清再经过一系列除菌滤膜过滤包括0.2微米（micron）和0.1微米滤膜。FBS要通过三层0.1微米滤膜，其他血清可通过0.2微米滤膜。

4.终产品血清质量

1）化学检定：渗透压

pH

蛋白含量――电泳法

白蛋白 球蛋白 血红蛋白

随着牛年龄增加血清中总蛋白含量相应增加，总的血清蛋白含量可以确定产品规格和年龄。

2） 微生物学检查：细菌、真菌符合USP标准。

支原体：在支原体专业培养基上培养了3～4周，培养温度36℃±2℃分别在需氧和厌氧条件下进行，有的还需要在支原体琼脂培养皿上传4次，Hoechst荧光素DNA染色检查那些培养法无法检出的支原体如猪鼻支原体等。

病毒检查：

牛兰舌病毒 Bovin blue tongue

牛腺病毒 Bovine Adenovirus

牛细小病毒 Bovine Parvovirus

牛病毒性腹泄病毒 Bovine Viral Diarhea Virus

狂犬病病毒 Rabies

呼肠弧病毒 Reovirus

牛呼吸道合胞病毒 BRSV

副流感病毒Ⅲ型 Parainfluenza

检查方法：

已证明无外源因子污染的牛细胞培养物，在细胞生长液中加15％待测血清，连传3代共21天。阴性对照细胞培养液中加15％已知无病毒污染的牛血清，与试验组同条件下进行。在观察期内注意细胞形态变化或细胞病变。在观察期内第14天待检样品和对照样品用标准病毒检测方法检查。

如待检细胞培养物经*消化后分种到6个含盖玻片的容器内。阴性对照样品按同样方法。再将牛腹泄病毒、牛细小病毒、牛腺病毒、狂犬病毒和呼肠弧病毒分别加入待检培养物盖玻片容器内作为阳性对照，再培养7天，用荧光抗体技术进行检查。

细胞病变或病毒引起的其他改变通过苏木精或伊红染色进行观察。取另外一个待检细胞培养瓶用人“O”红细胞、豚鼠红细胞和新鲜鸡红细胞作血球吸附病毒检查。试验在2～8℃和20～24℃进行。阴性对照细胞预先感染副流感Ⅲ型病毒作为阳性对照。未感染的细胞作为阴性对照。

3）内毒素检测

用鲎试剂检查。

4）细菌噬菌体检查

主要检查E.Coli（C300 or K-12）噬菌体。

5）激素含量测定

每批FBS对某些激素含量都要进行测定，包括：雌二醇、胰岛素、孕硐、睾丸素、甲状腺素等。

6）血红蛋白检测

血红蛋白与氧合血红蛋白的比≥70％，血红蛋白含量≤mg15/dl。

7）细胞生长效果测定

a.细胞克隆效果测定

细胞选择：Sp20/Ag-14 或P3X63-Ag8.653

血清浓度与细胞数:

10％血清／1个细胞／孔

4％血清／5个细胞／孔

细胞培养基RPMI－1640， 96孔培养盘36℃±2℃，5％二氧化碳培养10～15天。试验中选择一个已知参考牛血清作对照。

克隆效率计算：

克隆效率＝（阳性孔平均数/ 培养孔总数） X100％

相对克隆效率＝待测血清克隆效率/参考血清克隆效率

b.贴壁效率试验：

用人的传代细胞作每批血清的贴壁效率试验，A549（人肺癌细胞）该细胞可以反应出低浓度血清的贴壁变化。采用6孔培养盘每批血清用两种浓度和两种不同的细胞接种数即10％血清――100细胞／孔，4％血清200介细胞／孔。放36℃±2℃，湿润5％二氧化碳培养箱培养10～14天，计算着色细胞克隆，确定贴壁效率。从这两种不同血清浓度来确立实验血清支持细胞贴壁生长的水平，分析两种试验条件下平均贴壁效率。

贴壁效率（％）＝（每孔克隆平均数/ 每孔活存的培养细胞平均数） X100％

相对贴壁效率＝被测血清贴壁效率/参考血清贴壁效率

c. 二倍体纤维细胞促生长试验

*株 WI28 MRc5

25cm2细胞培养瓶，5％血清，每瓶接种1.5X105细胞连传3代，每代血清浓度和接种细胞数相同，每代培养7天，每代接种二个细胞瓶，36℃±2℃培养。以同样条件用已知参考血清进行平行培养。每代收获细胞计数，计算每批待检血清与参考血清的相对生长率（RGR）。

RGR＝（试验血清每瓶细胞平均数/ 参考血清每瓶细胞平均数） X100％