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FL3500多功能叶绿素荧光仪
FL3500多功能叶绿素荧光仪是专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻,叶绿体或类囊体悬浮物,乃至叶片进行光合作用研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制,可控制测量样品的温度,并配备单翻转光(STF),内置多种可用户自行修改的测量程序,可进行目前上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头,内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs(快速版为1μs)。系统配置的光合放氧测量模块,使其可以对放氧复合物的状态转换做更深入研究。
FL3500多功能叶绿素荧光仪配备有4种测量室:标准版、快速版、叶夹版、水下版。主机为双通道设计,可同时连接任意两种测量室,大大扩展了叶绿素荧光测量的应用范围,可以对任何类型的植物样品进行叶绿素荧光测量。
应用领域:
·植物光合特性和代谢紊乱筛选
·生物和非生物胁迫的检测
·植物抗胁迫能力或者易感性研究
·代谢混乱研究
·光合系统工作机理研究
·受胁迫植物光合生理应对策略研究
典型样品:
·蓝藻(蓝细菌)
·绿藻
·叶绿体悬浮物
· 类囊体悬浮物
·植物碎片
功能特点:
·具备双通道测量控制,可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用,各版本的测量头可互换使用
·内置多种可用户自行修改的测量程序,涵盖目前上对于叶绿素荧光的各种一般性研究和深入机理研究
·配备单翻转光(STF),可进行QA–再氧化动力学、S状态转换等光合机理研究
·配备高灵敏度检测器,可进行OJIP快速荧光动力学分析
·可控制测量样品的温度并进行磁力搅拌
技术参数:
·实验程序:叶绿素荧光诱导测量;PAM(脉冲调制)测量;OJIP快速荧光动力学测量;QA–再氧化动力学;S状态转换;叶绿素荧光淬灭
荧光参数:F0,Fm,Fv,F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETR等50多项叶绿素荧光参数与图像,OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数
·时间分辨率(采样频率):高灵敏度检测器,时间分辨率达4μs(快速版为1μs)
·控制单元:双通道通用高度精确性自动微处理器,可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用(无需另行购买控制单元)
·测量单元类型:可选择在一台主机上配备两种测量单元同时工作,推荐叶夹版+标准版/快速版或叶夹版+水下版
1.标准版
2.快速版:时间分辨率在标准版的基础上提高到1 μs,可精确捕捉和描绘快速荧光瞬变过程,使得运用PAM技术对OIJP曲线和光闪荧光诱导的快速动力学测量更加准确高效,能够更好的计算各种相关参数。
3.叶夹版
的叶夹式测量单元,测量区域直径为12.7mm(0.5 inch)。叶夹式测量单元可以无损地夹持叶片进行测量,而且不会使叶片脱离其原来的微环境。全部所需的光源与检测器都内置在测量单元进行直接测量,避免了一般的荧光仪使用光纤造成检测光信号的衰减。
4.水下版
设计用来直接在水下测量诸如水下植物,珊瑚或者海藻等样品的叶绿素荧光。的水下探头配有用于水下操作的特殊支架,zui大测量深度为水下1m。
·测量光闪:标准为波长617nm的橙光或455nm的蓝光,光闪时间2–5μs
·单翻转饱和光闪:标准光源为630nm的红光,光闪时间20–50μs
·持续光化学光:标准为630nm的红光或455nm的蓝光,zui大光强2500 μmol(photons)/m2.s;
·远红外光源(选配):用于激发光系统I,波长735nm
·氧电极(选配):测量藻类的氧气释放
·每组lED光源强度和时间可通关软件调控,同时光源可根据研究要求选配
·温度控制:TR 2000温度调节器,控温范围0–70℃,精确度0.1℃
·电磁搅拌:8mm×3mm标准磁力棒
·样品试管:底面积10×10mm,容积4ml
·AD转换器:试管式为500 kHz/16–bit
· FluorWin软件:定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示
典型应用:荧光诱导过程分析
产地:捷克
参考文献:
§ Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria, é Kiss, et al, 2013. Research for Food, Fuel and the Future
§ Excess Ca2+does not alleviate but increases the toxicity of Hg2+ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety
§ Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one
§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology
§ Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology
§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum
§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one
§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology
§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology
§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry