本产品仅供科学实验研究使用! 不能用于临床或动物诊断！

细胞简介：

小鼠子宫内膜间质分离自子宫组织；子宫是孕育胎儿的器官，位于盆腔中部，膀胱与直肠之间，其位置可随膀胱与直肠的充盈程度或体位而有变化。子宫的正常位置主要依靠子宫诸韧带、盆膈、尿生殖膈及会阴中心腱等结构维持，这些结构受损或松弛时，可以引起子宫脱垂。子宫内膜即黏膜，由上皮（属单层柱状上皮，有分泌细胞和纤毛细胞二种）和固有膜（由结缔组织构成，其内有大量的星形细胞，称为基质细胞）组成，子宫内膜可分为浅表的功能膜和深部的基底层，功能层较厚，约占内膜厚度的4/5；基底层较薄较致密，约占1/5，功能层可剥脱，而基底层不可剥脱。子宫内膜构成雌性哺乳动物子宫壁的内层，位于子宫腔面，在动物生殖生理活动中占有重要地位。子宫和子宫内膜是维持雌性动物生理功能和生育能力的重要器官，子宫内膜的再生修复是子宫的重要生理功能。体外培养的子宫内膜间质细胞对于研究其生理功能、药物作用以及各种致病因素作用下的病理生理改变具重要意义。

原代细胞培养条件：

‌温度‌：通常在37℃下进行，以模拟体内温度。

‌pH值‌：培养液的pH值应保持在7.2~7.4之间，以维持细胞的正常生理状态。

‌气体环境‌：在含有5% CO2的培养箱中进行，以促进细胞生长。

‌培养基‌：使用含有适当营养成分的培养基，如Eagle's MEM、DMEM等。

‌无菌操作‌：整个培养过程需要在无菌条件下进行，以防止污染。

方法简介：

实验室分离的小鼠子宫内膜间质经Vimentin免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

质量检测：

实验室分离的小鼠子宫内膜间质采用胶原酶消化结合差速贴壁法制备而来，细胞总量约为5×105cells/瓶。

培养信息：

培养基：含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等

换液频率：每2-3天换液一次

生长特性：贴壁

细胞形态：成纤维细胞样

传代特性：可传2-3代左右

消化液：0.25%

培养条件：气相：空气，95%；CO2，5%

原代细胞培养的具体操作步骤如下：

‌组织处理‌：将动物组织从机体中取出，剪碎后用等消化酶处理，使其分散成单个细胞。

‌细胞计数‌：使用血细胞计数器或其他方法对细胞进行计数，确保细胞密度适中。

‌接种培养‌：将细胞悬液接种到培养瓶中，加入适量的培养基，置于37℃、5% CO2的培养箱中培养。

‌换液和传代‌：定期更换培养液，当细胞达到一定密度时进行传代培养，以维持细胞的生长状态。

原代细胞的4种培养方法：

　　① 组织块培养法

　　组织块培养是常用、简便易行和成功率较高的原代培养方法。其基本方法是将剪成的小组织团块接种于培养瓶(或皿)中，瓶壁可预先涂以胶原薄层，以利于组织块粘着于瓶壁，使周边细胞能沿瓶壁向外生长。

　　② 消化培养法

　　③ 悬浮细胞培养法

　　对于悬浮生长的细胞，如白血病细胞、淋巴细胞、骨髓细胞、胸水和腹水中的癌细胞和免疫细胞无需消化，可采用低速离心分离，直接培养，或经淋巴细胞分层液分离后接种培养。

　　④器官培养

　　器官培养是指从供体取得器官或组织块后，不进行组织分离而直接在体外的特定环境条件下培养，器官培养可保持器官组织的相对完整性，可用于重点观察细胞间的联系、排列情况和相互影响，以及局部环境的生物调节作用

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