西班牙免校准多光阱光镊

免校准、多光阱—专为细胞组织力学设计的光镊

市场上wei一将高速多个光陷阱控制与直接力光谱相结合的光捕获平台。光镊装置安装在科学倒置显微镜上，可根据您的显微镜配置进行定制，并可与转盘共焦、落射荧光或 TIRF显微镜等多种成像技术相结合。其灵活性、精确性和易用性允许从一开始就进行的细胞力学实验，即使对于非专家用户也是如此。该系统是一款仪器，提供质量的光学捕获和力传感技术， 能够对活细胞和组织进行的操作和机械刺激，同时以直接、和非侵入的方式测量细胞力及其流变特性，所有这些都在科学实验室的典型预算范围内。

光捕获技术

基于声光转向技术，我们的光陷阱生成模块允许以 25 kHz 的频率同时生成和控制多达256 个光陷阱，比基于振镜的系统快一个数量级。光镊装置包括单频红外激光源（5W，1064nm）。我们直观且用户友好的 LightAce 控制软件将允许您单独手动控制每个光陷阱或对自动轨迹、周期性振荡和变形模式进行编程，并将它们同时应用于多个光陷阱。该系统允许记录细胞力学实验的视频，并与多个同步光阱的记录力和位置数据同步。

力谱技术

我们的基于光动量变化检测的直接力传感器是该仪器的核心。我们获得的力谱技术将允许您测量复杂介质中的光学捕获力，例如不规则物体上的活细胞和组织内部，并且远远超出力-距离曲线的线性区域，从而为的细胞力学实验打开了大门在体内条件下。部分？无需校准即可独立于样品和介质特性来测量力！ 我们的直接力传感器将允许您同时测量多个陷阱 (256) 上的力，使用其力反馈回路执行力夹紧，精确控制样品平面上的激光照射功率并跟踪被捕获物体的位置。

在细胞力学和软物质物理中的应用

该系统是细胞力学和软物质物理研究人员的工具，使用微球、全细胞或内源性细胞结构作为探针来机械刺激和感测您的样品，提供多种应用：

• 单分子水平的机械感受器力
• 细胞膜系链拉动和变形。
• 主动流变学：细胞和生物组织的弹性、粘度和刚度。
• 细胞核机械 转导。
• 细胞间相互作用和粘附力。
• 体内和体外运动蛋白动力学。
• 微型游泳者和细菌细胞运动力。

可以在已有显微镜上升级配置起来，免校准、使用简洁方便、经济。

★可直接自动测量细胞内和组织环境中微粒的受力,自动化细胞力学研究流程
★免校准测量, te适合测量不规则颗粒受力
★多光阱捕获和同步测量（>256个光阱）
★可高精度探测溶液、细胞内和组织内微环境的粘弹性
★同时荧光成像
★光镊不需要荧光标定，减少人为干预
★探测力的方式为光子动量改变，所以适合测量复杂环境难以用传统方式校准的样品，以及不规则颗粒
★多光阱同步测量，可追踪多个光阱的受力；
★操作方便，点击屏幕即可设置光阱，拖动光阱捕获目标颗粒，减少用户的移动样品池的操作；
★有微流变的测量模块，适合探测细胞内和组织内微环境的粘弹性
★三维高精度力学测量与操控

典型应用：
世联博研(北京)科技有限公司专注细胞力学和3D生物打印服务，客服电话：
★1、细胞层次的力学检测:
1.1、单细胞膜的受力-形变
测量细胞膜的弹性，捕获手柄小球挤压和拉伸细胞膜，测量受力与形变量的关系。
可研究细胞膜的弹性与细胞骨架蛋白的关系等。
1.2、单细胞上配体-受体相互作用力检测
捕获手柄小球（修饰有相应抗体或者结合蛋白）接触细胞表面，当配体-受体结合后拉伸时，测量小球受到光阱的
力，量化配体-受体结合对的作用力大小。
可研究免疫细胞的te异性识别机制及细胞表面分子和抗体分子间的相互作用等。
1.3 、细胞-细胞相互作用检测
直接捕获细胞接触靶细胞，待细胞结合一定时间后拉伸细胞，可测量细胞-细胞相互作用的力；还可控制细胞受到te
定刺激；
可原位研究细胞膜表面配体-受体相互作用力大小，以及免疫突触形成等。
1.4 、单/多细胞的j化和迁移与应力刺激（包括单细胞应力加载培养）
可借助手柄小球在细胞局域上施加应力刺激，研究细胞的j化，以及细胞迁移与应力刺激的关系。

★2、分子层次的动力学te性:
2.1、DNA/RNA的动力学te性
将DNA/RNA通过偶联接到手柄小球上，光阱控制手柄小球拉伸生物大分子，可获得DNA的hairpin结构和RNA的stem
结构打开的力学特征，以及结合蛋白对其动力学te性的影响。
2.2、 蛋白质结构域的受力调控
将蛋白质通过巯基结合DNA末端，将手柄DNA链接到微球上，光阱拉伸微球，可研究蛋白质结构折叠和去折叠的力
学特征。
2.3、 马达蛋白的动力学te性
将马达蛋白分子偶联在微球上，通过光阱将微球定位到microtubule或actin骨架蛋白上，马达分子消耗ATP分子转化为
机械能，可研究分子马达的运动的动力学te性和多分子协同运动te性。

★3、多颗粒操纵和细胞分选:
3.1、多颗粒操纵
可自由操纵多个颗粒进行空间排列及运动探测。
3.2、te定细胞分离
可将目标细胞捕获移动到区域，便于分离细胞。

★4、粘弹性测量:
4.1、细胞内粘弹性
光阱捕获细胞内的囊泡，以囊泡的主动/被动运动反演微流变te性，获得粘性和弹性模量。
4.2、 组织微环境的粘弹性
捕获导入的微粒，探测微粒的主动/被动运动反演微流变te性，获得粘性和弹性的模量。采用多光阱同时测量，可鉴
别不同区域的粘弹性。

★5、刚度、硬度测量:

应用文献案例：

• •R. Meissner, N. Oliver and C.Denz. “Optical Force Sensing with Cylindrical Microcontainers“.Part. Part. Syst. Charact. 2018, 1800062.
• •F.Català, F. Marsà, M. Montes Usategui, A. Farré & E. Martín-Badosa. “Influence of experimental parameters on the laser heating of an optical trap“. Sci. Rep. 7, 16052; doi:10.1038/s41598-017-15904-6 (2017).
• •Català, F. et al. “Extending calibration-free force measurements to optically-trapped rod-shaped samples“. Sci. Rep. 7, 42960; doi: 10.1038/srep42960 (2017).
• •R. Bola, F. Català. M. Montes-Usategui, E. Martín-Badosa. “Optical tweezers for force measurements and rheological studies on biological samples”.15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• •Martín-Badosa, F. Català, J. Mas, M. Montes-Usategui, A. Farré, F. Marsà. “Force measurement in the manipulation of complex samples with holographic optical tweezers”15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• Derek Craig, Alison McDonald, Michael Mazilu, Helen Rendall, Frank Gunn-Moore, and Kishan Dholakia. “ Enhanced Optical Manipulation of Cells Using Antireflection Coated Microparticles”.ACS Photonics, 2 (10), pp 1403–1409, (2015).
• •Xing Ma, Anita Jannasch, Urban-Raphael Albrecht, Kersten Hahn, Albert Miguel-López, Erik Schäffer, and Samuel Sánchez. “Enzyme-Powered Hollow Mesoporous Janus Nanomotors”. Nano Lett., 15 (10), pp 7043–7050, (2015).
• •Michael A. Taylor, Muhammad Waleed, Alexander B. Stilgoe, Halina Rubinsztein-Dunlop and Warwick P. Bowen. “Enhanced optical trapping via structured scattering“. Nature Photonics 9,669–673 (2015)
• •Gregor Thalhammer, Lisa Obmascher, and Monika Ritsch-Marte, “Direct measurement of axial optical forces“.Optics Express, Vol. 23, Issue 5, pp. 6112-6129 (2015)
• •Y. Jun, S.K. Tripathy, B.R.J. Narayanareddy, M. K. Mattson-Hoss, S.P. Gross, “Calibration of Optical Tweezers for In Vivo Force Measurements: How do Different Approaches Compare?”. Biophysical Journal, V 107, 1474-1484 (2014).
• •A. Farré, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “The measurement of light momentum shines the path towards the cell”, Opt. Pur Apl. 47, 239-248 (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “A force measurement instrument for optical tweezers based on the detection of light momentum changes”, Proc. SPIE 9164, 916412 (2014).
• •J. Mas, A. Farré, J. Sancho-Parramon, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “Force measurements with optical tweezers inside living cells”,  Proc. SPIE 9164, 91640U (2014).
• •F. Català, F. Marsà, A. Farré, M. Montes-Usategui, and E. Martín-Badosa, “Momentum measurements with holographic optical tweezers for exploring force detection capabilities on irregular samples”, Proc. SPIE 9164, 91640A (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “Optimized back-focal-plane interferometry directly measures forces of optically trapped particles” Opt. Express 20, 12270-12291 (2012).